Министерство здравоохранения СССР
Центральный ордена Ленина Институт усовершенствования врачей
ИНСТРУКЦИЯ
По мерам профилактики распространения инфекционных заболеваний при работе в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений.
Общие положения.
I. Основные правила работы в КДЛII.
II. Способы взятия крови.
III. Дезинфекция лабораторного инструментария, посуды, спецодежды, биоматериала, оборудования.
IV. Предстерилизационная очистка.
VI. Санитарное содержание помещений.
VII. Транспортировка и хранение биоматериалов.
Таблица 1. Приготовление моющего раствора.
Таблица 2. Предстерилизационная очистка (ручной способ)
Таблица 3. Стерилизация воздушным методом.
Таблица 4. Стерилизация паровым методом.
Таблица 5. Стерилизация химическим методом (растворами).
Рекомендуемая инструкция разработана сотрудниками кафедры клинической лабораторной диагностики ЦОЛИУ врачей (зав. Кафедрой профессор В.Т. Морозова, ассистент Е.О. Смолиговец) совместно с отделом очаговой дезинфекции дезинфекционной станции ГУЗМ (Гвелесиани Г.А., Смирнова В.В.).
В рецензировании принимали участие заведующий специализированной научно-исследовательской лабораторией эпидемиологии и профилактики СПИД к.м.н. Покровский В.В., заведующая Всесоюзным научно-методическим и контрольным центром по лабораторному делу д.м.н. Делекторская Л.Н., зам. Начальника госпиталя им. Бурденко Н.Н. по медицинской части Ивлиев А.С., главный специалист по лабораторной службе Москвы к.м.н. Каплан Б.С., главный специалист по лабораторной службе МЗ РСФСР Розенталь В.М. Москва, 1991
Общие положения
С целью профилактики инфицирования медицинского персонала лечебно-профилактических учреждений особое значение имеет выполнение требований противоэпидемического режима.
Сотрудники клинико-диагностических лабораторий подвергаются риску заражения СПИД, вирусным гепатитом, кишечными инфекциями и другими инфекционными заболеваниями. При этом следует иметь в виду, что в качестве главного фактора распространения выше названных заболеваний выступает кровь, мокрота, сперма, моча и другие секреты и экскреты организма человека. В клинико-диагностических лабораториях кровь и биологические жидкости должны считаться потенциально инфицированными.
Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя клинико-диагностической лаборатории.
Инструктаж среднего и младшего медицинского персонала проводится ответственным за технику безопасности не реже одного раза в квартал.
Инструкция составлена в соответствии с ОСТ 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы", а также приказом № 408 от 12 июля 1989 г. "О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране".
Инструкция предназначена для медперсонала клинико-диагностических лабораторий. Контроль за выполнением инструкции осуществляют специалисты санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций.
I. Основные правила работы в КДЛ.
Медицинскому персоналу клинико-диагностических лабораторий следует избегать контакта кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо:
Работать в медицинских халатах, шапочках, сменной обуви, а при угрозе забразгивания кровью или другими биологическими жидкостями, в масках, очках, клеенчатых фартуках.
Работать с исследуемым материалом в резиновых перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Избегать уколов и порезов.
Проводить разборку, мойку, прополаскивание лабораторного инструментария, посуды после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках.
В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2-х минут тампоном, обильно смоченным 700 спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным полотенцем. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода.
При подозрении попадания крови на слизистые оболочки, их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором борной кислоты или вводят несколько капель азотнокислого серебра; нос обрабатывают 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 700 спиртом или 1% раствором борной кислоты или 0,05% раствором марганцево-кислого калия.
Запрещается пипетирование крови ртом; следует использовать автоматические пипетки, а при их отсутствии – "груши".
Запрещается принимать пищу, пить, курить и пользоваться косметикой на рабочем месте.
Поверхность рабочих столов в конце каждого рабочего дня, а в случае загрязнения биологическим материалом немедленно, подвергается дезинфекции.
II. Способы взятия крови.
Взятие крови следует проводить в резиновых перчатках, соблюдая правила асептики, обрабатывая перчатки 700 спиртом перед каждым взятием. Перед проколом кожа пальца обследуемого обрабатывается стерильным тампоном (шариком из ваты), смоченным 700 спиртом. После взятия крови к раневой поверхности прикладывается новый стерильный тампон, смоченный 700 спиртом.
Извлечение скарификаторов проводится только с помощью пинцета, хранящегося в растворе дезсредства.
Стерильные тампоны хранятся в упаковке из бумаги, указанной в ОСТ 42-21-2-85, в количестве не более 20 штук.
Стерильные лабораторные инструменты хранятся в той же упаковке, в которой проводилась их стерилизация.
Взятие крови для гематологического исследования может осуществляться:
I вариант
После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло, перемешивают и используют для работы.
II вариант
Кровь набирается в индивидуальные, стерильные, предварительно выверенные капилляры объёмом 20 мкл и капилляра Панченко непосредственно с поверхности кожи проколотого индивидуальным копьём пальца пациента.
III вариант
Кровь в количестве 40 мкл набирают стерильным индивидуальным капилляром Панченко, предварительно смоченным цитратом в соотношении цитрата и крови 1:4 по объёму.
IV вариант
После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку, в которую предварительно внесено небольшое (на кончике глазной лопаточки) количество трилона Б. Пробирку с кровью тщательно перемешивают, вращая её между ладонями. Разлив крови пипетками по пробиркам осуществляется в лаборатории.
III. Дезинфекция лабораторного инструментария, посуды, спецодежды, биоматериала, оборудования.
Лабораторные инструменты, иглы, капилляры, предметные стекла, пробирки, меланжеры, счетные камеры, кюветы фотоэлектрометра, пипетки, наконечники, резиновые груши, баллоны и т.д., посуда после каждого использования должны подвергаться дезинфекции.
Использованные изделия промываются в ёмкости с водой. Промывные воды обеззараживаются кипячением в течение 30 минут или засыпают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом кальция (НГК) в соотношении 200 г на 1 л воды, перемешивают и обеззараживают в течение 60 минут. Промытые изделия кипят в закрытой емкости в воде в течение 30 минут, или в 2% растворе соды, дальнейшая предстерилизационная очистка не проводится.
Лабораторные инструменты могут быть обеззаражены погружением в раствор с дезинфицирующим раствором.
В качестве дезинфицирующих растворов используются следующие:
3% раствор хлорамина
6% раствор перекиси водорода
6% раствор перекиси водорода с 0,5% моющего средства ("Прогресс", "Астра", "Айна", "Лотос", "Лотос-автомат")
4% раствор формалина
0,5% раствор нейтрального гипохлорита кальция
0,5% раствор сульфохлорантина
Время обеззараживания – 60 минут.
Дезинфицирующие растворы используются однократно.
Емкости для проведения дезинфекции должны быть чётко маркированы, иметь крышки.
При дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, растворы дезинфицирующего средства в объёме 5-10 мл пропускают через канал с помощью груши для удаления остатков крови, сыворотки и др., после чего изделия полностью погружают в дезинфицирующий раствор во вторую ёмкость.
При погружении инструментов в горизонтальном положении полости каждого инструмента должны быть заполнены дезинфицирующим раствором.
Каждая партия сухих хлорсодержащих дезинфектантов перед использованием должна подвергаться контролю на содержание активного хлора.
Посуда, соприкасающаяся с кровью или сывороткой и не предназначенная для последующего контакта с обследуемым после дезинфекции промывается под проточной водой для полного удаления дезинфектанта и проходит необходимую технологическую обработку.
Ёмкости кювет-анализатора ФП, кюветы измерительной аппаратуры, пластиковые пробирки и т.д. обеззараживаются только 6% раствором перекиси водорода и промываются проточной водой.
С предметных стёкол с фиксированным и окрашенным мазком крови после проведения микроскопии удаляются остатки иммерсионного масла, стёкла кипятятся в мыльном растворе не менее 15 минут до полного отхождения краски, затем промываются под проточной водой, подсушиваются на воздухе и протираются.
Остатки крови, мочи, спинномозговой жидкости и т.п., пробы, содержащие разведенную сыворотку без добавления кислот, щелочей сливают в специальную тару и обеззараживают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом кальция в соотношении 1:5 в течение часа. При удалении сгустков следует предварительно отделить материал металлическим шпателем, который затем обеззараживается. Посуда из-под мочи, кала обрабатывается по описанной выше методике, но может не подвергаться стерилизации.
При загрязнении кровью или секретами мебели, инвентаря, приборов их следует немедленно дважды протереть ветошью, ватными или марлевыми тампонами, обильно смоченными дезинфицирующими растворами.
Использованную ветошь сбрасывают в специально выделенную ёмкость с дезраствором, маркированную: "Для дезинфекции использованной ветоши".
При загрязнении кровью или секретами спец. одежды, её снимают, предварительно обработав дезраствором участок загрязнения.
Стирка спецодежды на дому категорически запрещается. Смена спецодежды должна осуществляться не менее 2 раз в неделю.
Перчатки после окончания работы обеззараживаются погружением в 3% раствор хлорамина или 6% раствор перекиси водорода на 1 час или кипячением в течение 30 минут.
Одноразовый инструментарий (плашки, наконечники автоматических пипеток и т.д.) обеззараживаются и утилизируются в паровом стерилизаторе при 2,0 кг/см2 (1320С) – 60 минут.
IV. Предстерилизационная очистка.
После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого подлежит обязательной предстерилизационной очистке и стерилизации. Предстерилизационную очистку проводят с применением моющих растворов.
Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови путём постановки бензидиновой или амидопириновой проб; на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства ставится фенолфталеиновая проба.
Самоконтроль в клинико-диагностических лабораториях проводится ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.
При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.
V. Стерилизация.
После дезинфекции и предстерилизационной очистки проводят стерилизацию игл, шприцев, пробирок, пипеток, стеклянных палочек, стекол, меланжеров и т.д. (режимы и условия стерилизации указаны в таблицах 3-5).
VI. Санитарное содержание помещений.
Все помещения, оборудование, инвентарь должные содержаться в идеальной чистоте.
Влажная уборка помещений должна осуществляться не менее одного раза в сутки, а при необходимости чаще с применением моющих средств и дезинфекции.
Один раз в месяц в помещениях, где проводится работа с кровью, сывороткой делают генеральную уборку с использованием 3% раствора хлорамина, хлорной извести, извести белильной термостойкой.
Во время генеральной уборки тщательно моются стены, оборудование, мебель, проводится очистка полов от наслоений, пятен и т.д.
Генеральные уборки проводятся по утвержденному графику.
VII. Транспортировка и хранение биоматериалов.
При транспортировке биоматериал помещают в пробирки, закрывающиеся резиновыми пробками, сопроводительную документацию – в упаковку, исключающую возможность её загрязнения биоматериалом. Бланки направлений помещать в пробирку с кровью запрещается.
Транспортировка биоматериала осуществляются в закрытых контейнерах, подвергающихся дезинфекционной обработке.
При открывании пробок бутылок, флаконов, пробирок с кровью, плазмой или другими секретами следует не допускать разбрызгивания содержимого.
При хранении потенциально инфицированного материала в холодильнике необходимо поместить биоматериал в полиэтиленовый пакет.
В случае подтверждения зараженности биоматериала размораживание холодильника совмещают с его дезинфекцией.
При аварии (разбрызгивании зараженного материала и т.д.) помещение, где произошла авария, тщательно дезинфицируют.
Объём и вид дезинфекции определяются руководителем клинико-диагностической лаборатории.
Если авария произошла на центрифуге, то дезинфекционные мероприятия начинают проводить не ранее, чем через 30-40 минут, т.е. после осаждения аэрозоли.
Все случаи аварий и принятые в связи с этим меры подлежат обязательной регистрации во внутрибольничном журнале по технике безопасности.
Для ликвидации последствий аварии в лаборатории необходимо наличие аптечки, включающей:
- стерильные ватные и марлевые тампоны;
- 70% спирт;
- 1% раствор азотнокислого серебра;
- 1% раствор протаргола;
- 0,05% раствор марганцево-кислого калия;
- раствор йода спиртовой 1%;
- лейкопластырь.
Таблица 1. Приготовление моющего раствора.
Таблица 2. Предстерилизационная очистка (ручной способ)
Таблица 3. Стерилизация воздушным методом.
Таблица 4. Стерилизация паровым методом.
Таблица 5. Стерилизация химическим методом (растворами).
|
