Антимикробная активность препарата Миковелт и его применение при дерматомикозах и раневых инфекциях животных
|
Скачать 2.1 Mb.
|
|
показатели крови собак
Как видно из данных таблицы 31, биохимические показатели крови собак до опыта и во все дни исследований также практически не различались и существенно не изменялись в ходе опыта. На протяжении всего эксперимента дыхание и пульс у животных не менялись. Аппетит был нормальным, подвижность естественная. Таким образом, обработка крупного рогатого скота и собак Миковелтом не оказывает токсического воздействия на организм животных. 2.2.4. Изучение антимикробного действия Миковелта при раневых инфекциях у белых мышей и кроликов Изучение бактерицидного действия Миковелта при раневых инфекциях у белых мышей. Оценку бактерицидного действия Миковелта in vivo при раневых инфекциях проводили в экспериментах на беспородных белых мышах в отношении искусственно нанесенной смешанной культуры тест-штаммов бактерий, вызывающих гнойную патологию у животных - Escherichia coli 11229, Staphylococcus aureus 6538, Pseudomonas aeruginosa 15412. С этой целью у белых мышей опытной и контрольной групп (по 10 голов в каждой) скарифицировали кожу в области спины и втирали в раны смешанную суспензию культур тест-штаммов бактерий, в концентрации культуры каждого штамма 109 м.кл./мл. Мышам опытной группы 1 раз в день в течение 3 дней ежедневно на поврежденную и обсемененную бактериями кожу наносили Миковелт. Мышам контрольной группы аналогично наносили стерильную водопроводную воду. Ежедневно, в течение 14 дней за животными вели клинические наблюдения, учитывая общее состояние животных, развитие воспалительного процесса, нагноение ран, гибель животных (рис. 17, 18).  Рис. 17. Клиническое проявление воспалительного процесса у мышей опытной группы на 3 день с начала постановки опыта  Рис. 18. Клиническое проявление воспалительного процесса у мышей контрольной группы на 3 день с начала постановки опыта (павшее животное) Ежедневно от зараженных мышей опытной и контрольной групп отбирали смывы с поверхности скарифицированной кожи и определяли наличие или отсутствие исходных культур тест-штаммов бактерий. Было установлено, что у мышей опытной группы на 2 день с начала постановки опыта ранки подсыхали и затягивались. При этом, от мышей опытной группы, культуры тест-штаммов с обработанной Миковелтом поверхности скарифицированной кожи не были выделены. В контрольной группе на 3 день с начала постановки опыта пало 50% животных. От погибших мышей контрольной группы выделяли исходные культуры тест-штаммов бактерий во все дни исследований. Таким образом, Миковелт оказывает бактерицидное действие in vivo при заражении белых мышей культурами тест-штаммов бактерий, вызывающих раневые инфекции у животных. Изучение бактерицидного действия Миковелта при раневых инфекциях у кроликов. Оценку бактерицидного действия Миковелта при раневых инфекциях проводили в экспериментах на 9 кроликах породы «шиншилла» в отношении естественной микрофлоры кожи и искусственно нанесенной смешанной культуры тест-штаммов бактерий, вызывающих гнойную патологию у животных - Escherichia coli 11229, Staphylococcus aureus 6538, Pseudomonas aeruginosa 15412. У кроликов в области лопатки с двух сторон выстригали участки кожи размером 5х5 см. Кожа левого участка лопатки была определена как опытная, а правого – контрольная. С опытного и контрольного участков кожи отбирали смывы для определения естественной контаминации кожи бактериальной микрофлорой. Затем кожу левого участка обрабатывали Миковелтом с помощью ватного тампона, с последующей экспозицией 1 мин. Кожу правого участка аналогично обрабатывали стерильной дистиллированной водой. Затем с опытного и контрольного участков кожи вновь отбирали смывы для определения концентрации естественной микрофлоры после обработки. После этого кожу на обеих участках протирали влажной салфеткой, смоченной универсальным нейтрализатором, промывали стерильной водой и подсушивали. Затем на кожу контрольного и опытного участков наносили и равномерно растирали по 1 мл суспензии смешанной культуры тест-штаммов бактерий, в концентрации культуры каждого штамма 109 м.кл./мл. После подсушивания с обработанных участков кожи брали смывы для определения концентрации микроорганизмов на коже до обработки. Затем кожу левого участка обрабатывали Миковелтом с помощью ватного тампона, с последующей экспозицией 3 мин. Кожу правого участка аналогично обрабатывали стерильной дистиллированной водой. Затем с опытного и контрольного участков кожи вновь отбирали смывы. Смывы с кожи брали стерильными марлевыми салфетками, смоченными в растворе универсального нейтрализатора. Марлевые салфетки после взятия смывов помещали в отдельные пробирки со стерильным раствором универсального нейтрализатора и стеклянными бусами, и встряхивали в течение 10 мин. После чего по 0,1 мл смывной жидкости из опытных и контрольных пробирок засевали на среды Эндо, Плоскирева, МПА, желточно-солевой агар. Посевы инкубировали в термостате при 37С в течение 24 часов, после чего производили подсчет выросших колоний (табл. 32). Таблица 32. Бактерицидное действие Миковелта при обработке кожи кроликов с экспозицией 3 мин.
Как следует из полученных данных, Миковелт обладает 100% эффективностью при обеззараживании кожи экспериментальных кроликов как в отношении естественной, так и искусственно нанесенной бактериальной микрофлоры. Бактерицидное действие Миковелта наступает не позднее 3 мин экспозиции. 2.2.5. Изучение противогрибковой эффективности Миковелта на моделях кандидозной инфекции у белых мышей и кроликов Изучение противогрибкового действия Миковелта при раневой кандидозной инфекции у белых мышей. Оценку противогрибкового действия Миковелта in vivo при кандидозной раневой инфекции проводили в экспериментах на беспородных белых мышах в отношении искусственно нанесенной культуры тест-штамма С.albicans 1023. С этой целью у белых мышей опытной и контрольной групп (по 10 голов в каждой) скарифицировали кожу в области спины и втирали в раны суспензию культуры тест-штамма С.albicans 1023 в концентрации 109 м.кл./мл. Мышам опытной группы 1 раз в день в течение 3 дней ежедневно на поврежденную и обсемененную кандидами кожу наносили Миковелт. Мышам контрольной группы аналогично наносили стерильную водопроводную воду. Ежедневно, в течение 14 дней за животными вели клинические наблюдения, учитывая общее состояние животных, развитие воспалительного процесса, нагноение ран, гибель животных. Ежедневно от зараженных мышей опытной и контрольной групп отбирали смывы с поверхности скарифицированной кожи и определяли наличие или отсутствие исходной культуры тест-штамма С.albicans 1023. Было установлено, что у мышей опытной группы на 2 день с начала постановки опыта ранки подсыхали и затягивались. При этом, от мышей опытной группы культура тест-штамма кандиды с обработанной Миковелтом поверхности скарифицированной кожи не была выделена. В контрольной группе от всех мышей выделяли исходную культуры тест-штамма С.albicans 1023 во все дни исследований. Таким образом, Миковелт оказывает противогрибковое действие in vivo при заражении белых мышей культурой тест-штамма С.albicans 1023. Изучение противогрибкового действия Миковелта при раневой кандидозной инфекции у кроликов. Оценку противогрибкового действия Миковелта при кандидозной раневой инфекции проводили в экспериментах на 9 кроликах породы «шиншилла» в отношении естественной микрофлоры кожи и искусственно нанесенной культуры тест-штамма С.albicans 1023. У кроликов в области лопатки с двух сторон выстригали участки кожи размером 5х5 см. Кожа левого участка лопатки была определена как опытная, а правого – контрольная. С опытного и контрольного участков кожи отбирали смывы для определения естественной контаминации кожи бактериальной микрофлорой. Затем кожу левого участка обрабатывали Миковелтом с помощью ватного тампона, с последующей экспозицией 1 мин. Кожу правого участка аналогично обрабатывали стерильной дистиллированной водой. Затем с опытного и контрольного участков кожи вновь отбирали смывы для определения концентрации естественной микрофлоры после обработки. После этого кожу на обеих участках протирали влажной салфеткой, смоченной универсальным нейтрализатором, промывали стерильной водой и подсушивали. Затем на кожу контрольного и опытного участков наносили и равномерно растирали по 1 мл суспензии культуры тест-штамма С.albicans 1023, в концентрации 109 м.кл./мл. После подсушивания с обработанных участков кожи брали смывы для определения концентрации микроорганизмов на коже до обработки. Затем кожу левого участка обрабатывали Миковелтом с помощью ватного тампона, с последующей экспозицией 3 мин. Кожу правого участка аналогично обрабатывали стерильной дистиллированной водой. Затем с опытного и контрольного участков кожи вновь отбирали смывы стерильными марлевыми салфетками, смоченными в растворе универсального нейтрализатора. Марлевые салфетки после взятия смывов помещали в отдельные пробирки со стерильным раствором универсального нейтрализатора и стеклянными бусами, и встряхивали в течение 10 мин. После чего по 0,1 мл смывной жидкости из опытных и контрольных пробирок засевали на МПА. Посевы инкубировали в термостате при 37С в течение 24 часов, после чего производили подсчет выросших колоний (табл. 33). Таблица 33. Противогрибковое действие Миковелта при обработке кожи кроликов с экспозицией 3 мин.
Таким образом, Миковелт обладает 100% эффективностью при обеззараживании кожи экспериментальных кроликов как в отношении естественной, микрофлоры кожи, так и искусственно нанесенной культуры тест-штамма С.albicans 1023. Фунгицидное действие Миковелта наступает не позднее 3 мин экспозиции. 2.2.6. Изучение эффективности Миковелта на моделях дерматомикозов у морских свинок и кроликов 2.2.6.1. Применение Миковелта при дерматомикозах у морских свинок и кроликов, вызываемых дерматофитами родов Trichophyton и Microsporum Для изучения противогрибкового действия Миковелта в отношении возбудителей дерматомикозов животных, культуры тест-штаммов Trichophyton verrucosum 480, Trichophyton violaceum 11, Trichophyton mentagrophytes 210, Microsporum gypseum 37, Microsporum canis 474 и Microsporon lanosum 22 высевали на агар Сабуро и культивировали 12 дней при температуре 27°С. Затем культуру тест-штамма каждого гриба вместе с агаром растирали в ступке до получения однородной кашицы. Для опыта было отобрано 72 морские свинки-аналоги, которых разделили на 12 групп – 6 опытных и 6 – контрольных, по 6 голов в каждой. У морских свинок опытных и контрольных групп на спине выстригали волосы на площади 5x5 см (рис. 19).   Рис. 19. Морская свинка перед постановкой опыта Подготовленный к заражению участок кожи протирали спиртом, а затем острым скальпелем скарифицировали кожу до появления сукровицы. В подготовленный таким образом участок кожи морским свинкам втирали в течение 1 мин. кашицу из культуры тест-штамма определенного гриба. За всеми животными ежедневно вели клинические наблюдения, учитывая время появления первых признаков развития инфекционного процесса. Было установлено, что первые признаки заболевания трихофитией и микроспорией у морских свинок как опытных, так и контрольных групп возникало на 5-7-й день после заражения в виде гиперемии и шелушения кожи в месте инфицирования (рис. 20).  Рис. 20. Местное воспаление кожи у морской свинки на 7 день после инфицирования культурой тест-штамма T.verrucosum 480 На 7-10-й день после заражения у морских свинок развивалось местное воспаление, появлялся инфильтрат с корками на поверхности кожи. Наличие грибкового процесса у животных подтверждали микроскопическим исследованием соскобов с кожи, корок и обломавшихся волос. Для дифференциальной диагностики трихофитии и микроспории была использована лампа Вуда, в свете которой пораженные грибами рода Microsporon волосы светились зеленым светом (рис. 21).   а) б) Рис. 21. Зеленоватое свечение волос под лампой Вуда у морских свинок, зараженных M.gypseum 37 (а); б – волосы морской свинки, зараженной T. mentagrophytes 210 (зеленое свечение отсутствует) У всех 72 морских свинок, используемых в исследованиях, на 14 сутки после заражения была диагностирована трихофития или микроспория, в зависимости от культуры тест-штамма гриба, которым заражали животных опытных и контрольных групп. Морских свинок опытных групп разделили на 3 группы, по 2 головы в каждой. В каждой опытной группе 2 морским свинкам Миковелт применяли 1 раз в день 7 дней подряд, 2 животным – 2 раза в день 3 дня подряд и 2 животным – 1 раз в день 3 дня подряд. Всем животным опытных групп на пораженные участки кожи с помощью марлевого тампона наносили по 0,5 мл Миковелта, полностью смачивая не только пораженный участок кожи, но и здоровую кожу на границе с пораженной на расстояние не менее 1 см. Морским свинкам контрольных групп аналогично наносили стерильную дистиллированную воду. За животными вели наблюдение в течение 2 месяцев. Каждые 3 дня с момента обработки животных, у морских свинок опытных и контрольных групп отбирали соскобы и волосы с пораженного участка кожи и проводили микроскопические исследования на наличие или отсутствие грибов. Кроме этого, всех животных исследовали дополнительно люминесцентным методом (лампа Вуда). Критерием терапевтической эффективности Миковелта служили различия в сроках освобождения от грибов и излечения морских свинок в опытных и контрольных группах за период наблюдения - 1 месяц после постановки опыта (табл. 34). Было установлено, что Миковелт обладает 100% эффективностью, т.к. за период наблюдения животные всех опытных групп полностью выздоравливали. Таблица 34. Терапевтическая эффективность Миковелта при трихофитии и микроспории на моделях дерматомикозов морских свинок
Наиболее эффективным способом лечения морских свинок оказалась обработка животных 1 раз в день 3 дня подряд. При таком способе обработки выздоровление животных наступало, в среднем, на 12-й день с начала постановки опыта, что на 5 дней раньше, чем при обработке 1 раз в день 7 дней подряд и на 4 для раньше, чем при обработке 2 раза в день 3 дня подряд. При этом у животных корки отпадали на 5-6 день после первой обработки, через 5-7 дней после отпадения корок кожа полностью эпителизировалась и зарастала новой шерстью (рис. 22). У контрольных животных корки отпадали через 3 недели с начала постановки опыта, обнажая эрозированные поверхности, которые в течение 4-5 недель эпителизировались и также зарастали новой шерстью. Следовательно, длительность процесса самовыздоровления у животных контрольных групп с момента появления первых клинических признаков грибковой инфекции составила, в среднем 6,4 недели (45 суток). Таким образом, морские свинки, обработанные Миковелтом 1 раз в день 7 дней подряд выздоравливали на 19 сутки с момента постановки опыта; обработанные 2 раза в день 3 дня подряд выздоравливали на 18 сутки, обработанные 1 раз в день 3 дня подряд выздоравливали на 12 сутки с момента постановки опыта. Контрольные животные самовыздоравливали на 45 сутки с начала постановки опыта. Наиболее высокую эффективность, с учетом сроков выздоровления, Миковелт проявил при лечении животных, зараженных M.gypseum 37. Срок выздоровления, сут. 
Рис. 22. Сроки выздоровления морских свинок, обработанных Миковелтом разными способами (животные, зараженные: I - T.verrucosum 480; II - T.violaceum 11; III - T.mentagrophytes 210; IV - M.gypseum 37; V - M.canis 474; VI - M.lanosum 22) Для изучения противогрибкового действия Миковелта в отношении возбудителей дерматомикозов животных, использовали также кроликов, которых аналогично, как описано выше, заражали культурами тест-штаммов Trichophyton verrucosum 480, Trichophyton violaceum 11, Trichophyton mentagrophytes 210, Microsporum gypseum 37, Microsporum canis 474 и Microsporon lanosum 22. Для опыта было отобрано 12 кроликов, которых разделили на 6 групп, по 2 кролика в каждой – 1 опытный и 1 контрольный. У кроликов опытных и контрольных групп на наружной поверхности обоих ушей скарифицировали кожу и втирали в подготовленный таким образом участок кожи в течение 1 мин. кашицу из культуры тест-штамма определенного гриба. За всеми животными ежедневно вели клинические наблюдения, учитывая время появления первых признаков развития инфекционного процесса. Было установлено, что первые признаки заболевания трихофитией и микроспорией у кроликов как опытных, так и контрольных групп возникали на 6-8 сутки после заражения в виде гиперемии и шелушения кожи в месте инфицирования (рис. 23).   Рис. 23. Кролики опытных и контрольных групп, зараженные дерматофитами У кроликов на месте инфицирования в области ушей, а также в области носа и глаз развивалось местное воспаление, появлялся инфильтрат с корками на поверхности кожи. Наличие грибкового процесса у животных подтверждали микроскопическим исследованием соскобов с кожи, корок и обломавшихся волос. Для дифференциальной диагностики трихофитии и микроспории была использована лампа Вуда, в свете которой пораженные грибами рода Microsporon волосы светились зеленым светом. У всех кроликов, используемых в исследованиях, на 14 сутки после заражения была диагностирована трихофития или микроспория, в зависимости от культуры тест-штамма гриба, которым заражали животных опытных и контрольных групп. Кроликов опытной группы лечили Миковелтом, втирая его в пораженные участки кожи 1 раз в день 3 дня подряд. Контрольным животным аналогично втирали стерильную дистиллированную воду (рис. 24).   Рис. 24. Обработка кроликов опытной группы Миковелтом За животными вели наблюдение в течение одного месяца. Каждые 3 дня с момента обработки животных, у кроликов опытных и контрольных групп отбирали соскобы и волосы с пораженного участка кожи и проводили микроскопические исследования на наличие или отсутствие грибов. Кроме этого, всех животных исследовали дополнительно люминесцентным методом. Критерием терапевтической эффективности Миковелта служили различия в сроках освобождения от грибов и излечения кроликов в опытных и контрольных группах за период наблюдения. Было установлено, что Миковелт обладает 100% эффективностью в отношении возбудителей трихофитии и микроспории, т.к. за период наблюдения кролики всех опытных групп полностью выздоравливали. На 3-5 день после первой обработки кроликов Миковелтом признаки воспаления на пораженных участках исчезали, через 7-10 дней после третьей обработки Миковелтом пораженная кожа кроликов полностью эпителизировалась здоровым эпидермисом. У контрольных животных самовыздоровление протекало медленно. Кролики, больные трихофитией, самовыздоравливали через 35-40 дней. Кролики контрольных групп, зараженные возбудителями микроспории, были умерщвлены, т.к. начала развиваться генерализованная форма инфекции и самовыздоровления кроликов не наблюдалось. Таким образом, Миковелт является эффективным средством при трихофитии и микроспории кроликов при обработке их 1 раз в день 3 дня подряд. 2.2.6.2. Эффективность Миковелта при дерматомикозе морских свинок, вызванном эпидермофитоном Для определения эффективности Миковелта при дерматомикозе морских свинок, вызванном эпидермофитоном, были созданы 2 опытные и 2 контрольные группы животных - аналогов, по 5 голов в каждой. Для инфицирования морских свинок использовали порошкообразную культуру Epidermophyton rubrum 64. Инокулят втирали в боковую поверхность тела морских свинок опытной и контрольной групп после проведенной эпиляции и скарификации кожи. Определяли профилактическую и терапевтическую эффективность Миковелта. В первой опытной группе животных (профилактическая) сразу же после заражения морских свинок обрабатывали Миковелтом с профилактической целью, втирая препарат в зараженное место 1 раз в день 3 дня подряд. Животным контрольной группы аналогично втирали стерильную воду. Во второй опытной группе животных (терапевтическая) Миковелт использовали с терапевтической целью. Для этого после заражения морских свинок наблюдали развитие клинической картины поражения животных эпидермофитоном и в опытной и в контрольной группах. Было установлено, что на 5-й день после заражения у животных на месте инокуляции гриба появлялась гиперемия и небольшое шелушение. Еще через 3-5 дней образовывались пустулы и корочки с тусклыми обламывающимися волосками. В коже и волосках с помощью световой микроскопии обнаруживали мицелий гриба. Больных животных опытной группы обрабатывали Миковелтом, втирая препарат в зараженное место 1 раз в день 3 дня подряд. Животным контрольной группы аналогично втирали стерильную воду. Критерием профилактической эффективности Миковелта являлось отсутствие клинических признаков дерматомикоза и отрицательный результат при микроскопии у животных опытной группы в сравнении с контрольными животными, терапевтической эффективности - различие в сроках освобождения от эпидермофитов и излечение морских свинок в опытных и контрольных группах в течение срока наблюдения - 1 месяц после постановки опыта (табл. 35). Таблица 35. Профилактическая и терапевтическая эффективность Миковелта при эпидермофитозе морских свинок
Было установлено, что у животных, которым препарат применяли сразу после заражения, клинические признаки болезни не развивались, мицелий гриба в соскобах кожи после обработки Миковелтом не обнаруживался. Морские свинки терапевтической группы, обработанные Миковелтом 1 раз в день 3 дня подряд, выздоравливали на 12 сутки после обработки, в то время, как животные контрольных групп самовыздоравливали на 32 сутки после начала постановки опыта. Таким образом, Миковелт обладает 100% профилактической и терапевтической эффективностью при эпидермофитозе морских свинок. 2.2.7. Изучение бактерицидного, противовоспалительного и ранозаживляющего действия Миковелта при раневых инфекциях у лабораторных животных Для изучения бактерицидного, противовоспалительного и ранозаживляющего действия Миковелта при раневых инфекциях у лабораторных животных исследования проводили на белых мышах, белых крысах, кроликах и. Оценку бактерицидного действия Миковелта при раневых инфекциях лабораторных животных проводили в экспериментах на кроликах в отношении естественной и искусственно нанесенной культуры тест-штамма E.coli 11229. У кроликов в области лопатки с двух сторон выстригали участки кожи размером 5х5 см. С опытного и контрольного участков кожи отбирали смывы для определения естественной контаминации кожи бактериальной микрофлорой. Затем на кожу наносили и равномерно растирали по 1 мл суспензии суточной культуры E.coli 11229, содержащей 2,0х108 КОЕ/мл. После подсушивания микробной взвеси с обработанных участков кожи брали смывы для определения концентрации микроорганизмов на коже до обработки. Затем кожу левого участка обрабатывали Миковелтом с помощью ватного тампона, с последующей экспозицией 1 мин. Затем с опытного и контрольного участков кожи вновь отбирали смывы. Смывы с кожи брали стерильными марлевыми салфетками, смоченными в растворе универсального нейтрализатора. Марлевые салфетки после взятия смывов помещали в отдельные пробирки со стерильным раствором универсального нейтрализатора и стеклянными бусами, и встряхивали в течение 10 мин. После чего по 0,1 мл смывной жидкости из опытных и контрольных пробирок засевали на среды Эндо, Плоскирева, МПА и желточно-солевой агар. Посевы инкубировали в термостате при 37С в течение 24 часов, после чего производили подсчет выросших колоний (табл. 36). Таблица 36. Бактерицидное действие Миковелта при обработке кожи кроликов, искусственно контаминированной E.coli 11229
Как следует из полученных данных, Миковелт обладает 100% эффективностью при обеззараживании кожи экспериментальных животных как в отношении естественной, так и искусственно нанесенной микрофлоры. Противовоспалительное действие Миковелта определяли методом онкометрии, с использованием белых беспородных крыс массой до 200 г. Животных отбирали таким образом, чтобы исходный средний объем лапок во всех экспериментальных группах был примерно одинаков. Экспериментальных животных разбивали на 2 группы по 6 особей в каждой. Крысам под апоневроз лапки вводили 0,1 мл 10% суспензии каолина, который вызывал развивающийся во времени отек лапки. Степень отека отражала интенсивность воспаления. Величину отека измеряли по количеству вытесненной из капсулы онкометра воды при погружении в нее лапки. Первой группе животных вводили только каолин. Эта группа являлась контрольной. Животным опытной группы 3 раза в день на лапку наносили из аэрозольного баллончика Миковелт. Онкометрическое измерение объема лапок в каждой группе животных проводили через 1, 2, 3 и 24 часа после введения в лапку каолина. Полученные экспериментальные данные представлены на рисунке 25.  Время, ч  - Контроль - ОпытРис. 25. Динамика местного противовоспалительного действия Миковелта на организм белых крыс Как следует из полученных данных, Миковелт оказывал местное противовоспалительное действие на организм крыс. При этом, показатель величины отека лапок крыс опытной группы через 24 часа после обработки Миковелтом был в 2,1 раза меньше, чем в контрольной группе животных. Ранозаживляющее действие Миковелта изучали при скарификации кожи у кроликов и белых мышей, при нанесении кроликам линейных кожных разрезов и искусственном образовании абсцессов. Перед экспериментом 3 кроликам выстригали шерсть в области спины, с двух сторон чуть ниже позвоночника. Кожу на контрольном и опытном участках повреждали инъекционной иглой, нанося неглубокие царапины в виде сетки. На опытный участок 1 раз в день в течение 7 суток наносили аэрозольным способом Миковелт, на контрольный участок аналогично наносили стерильную водопроводную воду. За животными вели ежедневные наблюдения, учитывая скорость заживления ран. Было установлено, что нанесение Миковелта на скарифицированную кожу животных ускоряет процесс заживления искусственно нанесенных ран. На 5 сутки с начала постановки опыта царапины на участках кожи кроликов, обработанных Миковелтом, заживали и на 7 сутки бесследно исчезали, в то время как в контроле заживление кожи проходило в 2 раза медленнее и на 5 сутки 50% царапин представляли собой не закрывшиеся мокнущие ранки. В ходе изучения ранозаживляющего действия Миковелта кроликам также была проведена операция по нанесению линейных кожных ран под эфирным наркозом. Кожу спины у 6 кроликов разрезали до собственной фасции, длина разреза составляла 25±1 мм. Затем на равном расстоянии накладывали 2 шва, сближающие края раны. Для удобства последующего измерения размеров ран накладывались швы с таким расчетом, чтобы эпителий боковых краев раны не соприкасался и эпителизация происходила от конечных краев раны. Трем кроликам на раны наносили Миковелт аэрозольным способом 1 раз в день в течение 3 дней. Контрольным животным аналогично наносили стерильную водопроводную воду. Оценку ранозаживляющего действия Миковелта проводили по времени и динамике полного срастания краев раны на 5, 10 и 15 дни наблюдения, а также по времени полного отторжения струпа. Динамика заживления ран в группах экспериментальных животных по степени уменьшения их линейного размера представлена в таблице 37. |
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Похожие:
 |
Инструкция по применению лекарственного препарата Амоксигард для... В 1 мл лекарственного препарата в качестве действующего вещества содержится 140 мг амоксициллина (в форме амоксициллина тригидрата)... |
 |
Фармако-токсикологические свойства и эффективность применения препарата... Диагностика болезней и терапия животных, патология, онкология и морфология животных |
|
Фармако-токсикологические свойства и эффективность применения препарата... Диагностика болезней и терапия животных, патология, онкология и морфология животных |
|
Морфофункциональные изменения в печени при токсическом поражении и при его коррекции Диагностика болезней и терапия животных, патология, онкология и морфология животных |
|
Методические указания му 09 Издание официальное Роспотребнадзор Москва... Организация и проведение дезинфекционных мероприятий при дерматомикозах: Методические указания. – М. Федеральное государственное... |
|
Что делать, если скорая не едет? Орз и гриппе, многих «детских инфекциях», при бактериальных инфекциях, в том числе при пневмониях и ангинах. Понятно, что решение... |
|
Учебно-методическое пособие для самостоятельной работы студентов... Ситуационные задачи по теме: «сестринское обследование и уход при острых кишечных инфекциях» |
|
Инструкция по применению препарата асд. Создатель препарата Препарат асд является жидкостью, приготовленной из тканей животных по особой методике. Асд выпускается в 2 фракциях n 2, n 3 |
|
Разработка и применение лекарственных средств на основе ароксиалканкарбоновой... Разработка и применение лекарственных средств на основе ароксиалканкарбоновой кислоты |
|
Рекомендации по безопасному применению кордарона (амиодарона гидрохлорида) Кордарон Вместе с тем оказалось, что переносимость препарата при его длительном применении оказалась хуже, чем у b–адреноблокаторов и антагонистов... |
|
Инструкция по применению Тилозина 50 и Тилозина 200 при бактериальных инфекциях у животных Лекарственная форма: раствор для инъекций. Тилозин 50 и Тилозин 200 в 1 мл содержат в качестве действующего вещества тилозина основание... |
|
Клинические рекомендации рациональное использование антибиотиков... Рациональное использование антибиотиков при инфекциях дыхательных путей в общей врачебной практике |
|
Инструкция по применению средства гемостатического «Гемоблок» ту 9391-002-68087337-2012 Сочетает гемостатические и антисептические свойства. Применяется при обработке раневых поверхностей при хирургических операциях,... |
|
Фармако токсикологические свойства минерал сорбента сорби и его применение... |
|
Прием (осмотр, консультация) врача-специалиста Стандарт специализированной медицинской помощи детям при хронических герпесвирусных инфекциях |
|
Инструкция по применению Бензилпенициллина натриевой соли для инъекций... ... |