Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран




Скачать 386.13 Kb.
Название Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран
страница 3/4
Тип Обзор
rykovodstvo.ru > Руководство эксплуатация > Обзор
1   2   3   4

2 Материалы и методы

2.1 Образцы для исследования

Образцы для исследования были любезно предоставлены А. Субботиным и П. Сорокиным (Институт проблем экологии и эволюции им. Северцова, Москва).

В нашем распоряжении оказались образцы фекалий четырех тигров:

♀Барышня–Амурский тигр, г. Волгоград. г.р. 2007, собрано 17.12.2013;

♀Матрена–Амурский тигр, г. Волгоград. г.р. 2002, собрано 17.12.2013;

♂Зевс–Амурский тигр, г. Волгоград. г.р. 2002, собрано 17.12.2013;

♀Принцесса–Амурский тигр, Московский зоопарк, г.р. 2002.

Также, П. Сорокиным нам были любезно предоставлены образцы мышечной ткани двух самцов, убитых браконьерами на Амуре и 5 образцов ДНК разных амурских тигров (самцов и самок), выделенной из тигриных фекалий в лаборатории Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова, и в дальнейшем использованной в проверке тест-системы.

Российской академии наук (ИПЭЭ РАН).

2.2 Очистка ДНК из различного биологического материала тигра

Был использован коммерческий набор реагентов компании ДНК-Технология «Проба-ГС». В этом наборе для связывания ДНК используется силикатный сорбент. В пробирку вносят образец биологического материала, к нему добавляют лизирующий раствор и силикатный сорбент. Затем, путем нагревания, центрифугирования, использования промывочных и элюирующего раствора, получают очищенный препарат ДНК.

Инструкция по очистке ДНК, применяющаяся в комплекте «Проба-ГС»:

Примечание. В лизирующем растворе и в промывочном растворе №1 допускается выпадение осадка, перед началом работы его необходимо растворить нагреванием флакона при 50 °С в течение 15–20 мин.

  1. Промаркируйте для каждого исследуемого образца и отрицательного контрольного образца «К-» по одной пробирке объёмом 1,5 мл.

  2. Внесите по 50 мкл подготовленного биоматериала в пробирки для исследуемых образцов. В пробирку«К-» биоматериал не вносится.

  3. В пробирку, маркированную «К-», внесите 50 мкл физиологического раствора стерильного.

  4. Приготовьте смесь лизирующего раствора с сорбентом. Смешайте в отдельной пробирке:

  • 150 х (N+1) мкл лизирующего раствора,

  • 20 х (N+1) предварительно ресуспендированного сорбента,

  • где N + 1 – количество анализируемых образцов с учётом «K-» (N) с запасом на 1 образец.

  1. Добавьте в каждую пробирку по 170 мкл полученной смеси.

  2. Плотно закройте крышки пробирок, встряхните на вортексе в течение 3–5 сек.

  3. Термостатируйте пробирки в течение 20 мин при 50°С.

  4. Центрифугируйте пробирки при 13000 об/мин в течение 1 мин.

  5. Не задевая осадок, полностью удалите надосадочную жидкость (отдельным наконечником из каждой пробирки).

  6. Добавьте к осадку 200 мкл промывочного раствора №1 и встряхните пробирки на вортексе в течение 3–5 сек.

  7. Центрифугируйте пробирки при 13000 об/мин в течение 1 мин.

  8. Не задевая осадок, полностью удалите надосадочную жидкость (отдельным наконечником из каждой пробирки).

  9. Добавьте к осадку 200 мкл промывочного раствора №2 и встряхните пробирки на вортексе в течение 3–5 сек.

  10. Центрифугируйте пробирки при 13000 об/мин в течение 1 мин.

  11. Не задевая осадок, полностью удалите надосадочную жидкость (отдельным наконечником из каждой пробирки).

  12. Добавьте к осадку 200 мкл промывочного раствора №3 и встряхните пробирки на вортексе в течение 3–5 сек.

  13. Центрифугируйте пробирки при 13000 об/мин в течение 1 мин.

  14. Не задевая осадок, полностью удалите надосадочную жидкость (отдельным наконечником из каждой пробирки).

  15. Откройте крышки пробирок и высушите осадок при 50°С в течение 5 мин.

  16. Добавьте к осадку 50 мкл элюирующего раствора и встряхните пробирки на вортексе в течение 5–10 сек.

  17. Прогрейте пробирки при 50°С в течение 5 мин.

  18. Центрифугируйте пробирки при 13000 об/мин в течение 1 мин. Если образец предполагается хранить более 7 суток, перенесите надосадочную жидкость в новую пробирку.

Надосадочная жидкость, содержащая выделенную ДНК, готова к внесению в реакционную смесь для ПЦР–амплификации.

Полученный препарат ДНК можно хранить до 7 суток при температуре 2–8°С или до года при минус 20°С

2.3 Проведение ПЦР-реакции

Состав ПЦР-реакции:

  1. 10-ти кратный ПЦР-буфер с Mg2+ (производства ДНК-Технология).

  2. Нуклеотиды 25 и 5 мкм/мл (производства ДНК-Технология).

  3. Taq-полимераза (производства ДНК-Технология).

  4. Праймеры (производства ДНК-Технология).

  5. Деионизованная вода (производства EMD Millipore , MilliQ).

  6. Зонд. (производства ДНК-Технология).

  7. Минеральное масло (производства Sigma).

Объем реакционной смеси в нашем случае составлял 35 мкл.

Табл.1 Порядок и объем внесения реагентов в пробирку для «обычной» ПЦР

Компонент

Объем на одну пробирку (мкл)

MQ

29

PCRB (10х)

0,5

dNTP (25 мкм/мл)

0,5

Taq-полимераза

0,5

Праймеры (50х)

3,5

ДНК

1

Табл.2 Порядок и объем внесения реагентов в пробирку для ПЦР в «реальном времени»

Компонент

Объем на одну пробирку (мкл)

MQ

29,05

PCRB

3,5

dNTP

0,7

Taq-полимераза

0,7

Зонд

0,35

Праймеры

0,7

ДНК

0,7

После внесения реакционной смеси в пробирки, мы добавляли в каждую по капле минерального масла, а затем центрифугировали при 13,4 тыс. обор./мин. После этого мы ставили пробирки в прибор (ДТ-322, ДНК-Технология) и запускали соответствующую программу, давали пройти 50 циклов и затем либо анализировали график, если это была ПЦР «в реальном времени», либо делали электрофорез, если это была обычная ПЦР.

Программа ПЦР-амплификации

Рабочий объем смеси – 35мкл.

9autoshape 34,0°C – 10 сек

64,0°C – 20 сек (считывание флуоресценции) x 50 циклов

68,0°C – 10 сек

2.4 Электрофорез в агарозном геле

Этот метод основан на том, что ДНК, являясь сильно полярной молекулой, в электрическом поле будет двигаться в геле от анода к катоду.

Метод позволяет посмотреть прошла ли ПЦР, проверить правильность подобранных праймеров. Для начала делают агарозный гель. На 1 гр агарозы мы брали 5 мкл бромистого этидия, 100 мл буферного раствора TAE x 1, затем все это смешивают и доводят до кипения, дают немного остыть , после чего заливают в форму, в которой стояли гребенки (для лунок в геле). После 20 мин ожидания гель можно класть в камеру для электрофореза, в которой налит TAE x 1. Важно, чтобы буфер полностью закрывал гель. Далее ДНК после ПЦР разносят по лункам, смешивая методом пепетирования с краской, также наносим маркер (Geneladder 50). После заполнения нужных лунок, мы включаем источник постоянного тока (важно, чтобы прибор стабилизировался на напряжении), по прошествии 20-30 мин фиксируем результат. Фотофиксация результата происходит при помощи фотосистемы под действием ультрафиолета на гель.

2.5 Использованное программное обеспечение и программы

1. Для поиска праймеров использовали программу BLAST;

2. Для подборки последовательности олигонуклеотидов использовали Oligo 6.0

3. Для проведения ПЦР использовали программное обеспечение для ПЦР-амплификатора ДТ-322.

2.6 Материалы

Если не указано отдельно, использованы химические реагенты производства Sigma-Aldrich (Германия). Синтез олигонуклеотидов выполнен компанией ДНК-Технология.

3. Результаты и их обсуждение

3.1 Разработка тест-системы для определения пола тигра

3.1.1 Отработка методов очистки ДНК из мышечной ткани и фекалий тигра

Для определения оптимального объема образца для получения достаточного количества ДНК наилучшего качества, был проведён эксперимент по оценке качества экстракции ДНК из разного количества фекалий тигра.

Оценка качества и количества очищенной ДНК из фекалий.

В экстракцию были взяты четыре разных количества фекалий: 5мкл, 25мкл, 125мкл, 300 мкл, от одного тигра (Амурский тигр Барышня, собрано 17.12.13) и проведено выделение ДНК при помощи набора реагентов «Проба-ГС» как описано в разделе «Материалы и методы».

Для каждого полученного таким образом препарата ДНК была проведена ПЦР «в реальном времени» с праймерами и зондами на Х и Y-хромосомы тигра (описание тест-системы см. ниже). Также были поставлены 2 контрольных образца: К+ – образец ДНК из мышечной ткани самца (всегда хорошо амплифицируется) и К-, где вместо ДНК была внесена вода MQ. Результаты эксперимента представлены на рисунке 8.



Рисунок 8. Протокол ПЦР реакции при оценке выделения ДНК. Подписаны пробирки с удавшейся ПЦР.

Как видно из протокола (рис.8), результат амплификации присутствует лишь в образце, полученном из 25 мкл фекалий. Отсутствие продукта ПЦР в образце из 5 мкл фекалий можно объяснить недостаточным количеством получаемой ДНК, а отсутствие продукта в образцах из 125 мкл и 300 мкл – слишком низкой степенью очистки нуклеиновых кислот и, как следствие, ингибированием ПЦР. Срабатывание системы Y1 на образце ДНК самки можно объяснить неспецифичной работой тест-системы (скорее всего амплифицируется гомологичный Y-хромосоме фрагмент Х-хромосомы).

По полученным кривым можно примерно оценить количество ДНК в образце после экстракции. Исходя из Ср около 28-29 (для лучше сработавшей системы Х1) и принимая, что ПЦР с одной молекулы как правило даёт Ср около 40-42, можно оценить количество молекул, попавших в ПЦР как 1000. С учётом того, что в реакцию брали 1/50 объема полученного препарата ДНК, общее количество молекул в образце после экстракции можно оценить как 5х104.

Отдельно следует указать на проблему гетерогенности фекалий по содержанию ДНК. Этот вопрос достаточно хорошо проработан для образцов биологического материала человека (но можно предполагать, что ситуация аналогична и для фекалий тигра). Как известно из литературы, фекалии человека гетерогенны по содержанию ДНК, то есть ДНК человека распределена в структуре исходного биологического материала крайне неравномерно. Поэтому для получения воспроизводимых данных по количеству нуклеиновых кислот рекомендуется проводить гомогенизацию значительного (несколько миллилитров) препарата фекалий, после чего производят экстракцию ДНК из небольшого объема. Поскольку в нашем исследовании задача стабильного получения и оценки количества ДНК тигра из фекалий не ставилась, мы не прибегали к предварительной гомогенизации образца.

3.1.2 Подбор праймеров для специфичной наработки фрагментов Х и Y хромосом тигра

На момент начала исследования в базе данных присутствовал геном амурского тигра [30], но без указания хромосомной принадлежности последовательностей. Поэтому для обнаружения Х и Y- специфичных регионов нами было проведено сравнение генома тигра с геномом домашней кошки (для которой были данные по хромосомной принадлежности последовательностей). В результате были выбраны несколько регионов генома тигра, гомологичных Х или Y-хромосомам кошки.

Подбор праймеров осуществляли в программе Oligo 6.0, с учетом следующих требований:

  1. Длина 18-24 нуклеотида.

  2. Четыре и более 3’-концевых нуклеотида не должны быть комплиментарны самому праймеру, праймеру в паре, пробе или иным синтетическим олигонуклеотидам, добавляемым в реакцию.

  3. Температура отжига должна лежать в диапазоне 60-70˚С.

  4. Температура плавления праймеров, работающих в паре, для большинства приложений должна быть сходной.

  5. Желательно, чтобы температура плавления 5’- концевой части праймера была выше температуры плавления 3’- концевой части.

Таблица 3. Подобранные последовательности праймеров.

Названия тест-систем

Длины получающихся фрагментов в нуклеотидах

Название праймера и последовательность

Х1

215

AltX1-d1 – GCTTCCACGTTTGACCTCACCT

AltX1-r1 – AGTCCTGCAGGGGATGTGTATT

X2

365

AltX2-d1 – CGCCCAGCCCTCCCCACAGT

AltX2-r1 – GCAGCAGCGGTGGGTGACAT

Y1

241

AltY1-d1 – AGGCTCCAGGGTGAGCTGCTC

AltY1-r1 – GGGAACCGCAGCACAGGCTTC

Y2

192

AltY2-d1 – ACGGAGGGGGTGCATGTCTG

AltY2-r1 – AGCAAGCAGCCCTGCTGTG

Y3

96

AltY3-d1 – GTCTGGCAGTGTGGAAACTGACA

AltY3-r1 – TTCAGGATGTTGAATGCATGTTACG

Y4

228

AltY4-d1 – GGCGGATTAGGTGTAAAGCACAC

AltY4-r1 – GTTCGAAGGTGTAAACGTTACGAGA

3.1.3. Проверка специфичности срабатывания праймеров на образцах ДНК самок и самцов тигра

Сперва были подобраны 4 системы праймеров: две на Х и две на Y хромосому тигра соответственно. По результатам проверки специфичности срабатывания тест-систем оказалось, что тест-системы на Y-хромосому не специфичны (рис.9, рис.10, рис.11), т.е. срабатывают на самках и самцах одинаково. В этой связи нами были подобраны дополнительно две тест-системы на Y хромосому (названия систем Y3 и Y4), последняя из которых показала специфичное срабатывание (рис.11). При постановке систем на Х хромосому, обе системы срабатывали, однако эффективность и специфичность праймеров Х1 была несколько выше, чем Х2 (рис.9, рис. 12).



Рисунок 9. Электрофореграмма результатов ПЦР с двумя образцами ДНК (M2 и M4-самцы) из мышечной ткани со всеми тест-системами (X1, X2, Y1, Y2, Y3, Y4). M50 – маркер длин, цифрами подписаны длины фрагментов в парах нуклеотидов.



Рисунок 10. Электрофореграмма результатов ПЦР с четырьмя образцами ДНК: Барышня (♀), Матрена (♀), Зевс (♂), М4 (♂) – образцы ДНК из фекалий, М4 – ДНК из мышечной ткани. Использовали 3 тест-системы: Х1, Y3, Y4. M50 – маркер длин, цифрами подписаны длины фрагментов в парах нуклеотидов.



Рисунок 11. Электрофореграмма результатов ПЦР с тремя парами праймеров (Х1, Y3, Y4) и четырьмя образцами ДНК (М1-♂, 001 -♀, Tg2–♀, 001m–♀). M50 – маркер длин, цифрами подписаны длины фрагментов в парах нуклеотидов.

Рисунок 12. Электрофореграмма результатов ПЦР с тест-системой Х1 и 14-ю образцами ДНК (001–♀, 002–♀, 003–♂, 004–♀, М1–♂, М2–♂, М3–♂, М4–♂, Tg1–♀, Tg2–♀, Tg3–♂, Tg4–♀, 001m–♀, 001mn–♀). M50 – маркер длин, цифрами подписаны длины фрагментов в парах нуклеотидов.
1   2   3   4

Похожие:

Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon О научно-образовательном центре коллективного пользования фгбун имби
«Спектрометрия и хроматография» (далее – цкп) федерального государственного бюджетного учреждения науки «Институт морских биологических...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon История россии
Ран а. Н. Сахаров (отв редактор). докт ист наук В. П. Дмитренко (зам отв редактора), академик ран и. Д. Ковальченко, член-корр ран...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Российская академия наук институт социально-экономического развития территорий ран
Исэрт ран (ранее внкц цэми ран) продолжает знакомить своих подписчиков с наиболее интересными, на наш взгляд, публикациями, затрагивающими...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Полиморфизм ДНК микобактерий, вызывающих неспецифические туберкулиновые...

Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Сравнительный эколого-генетический анализ микроспоридий и их хозяина...
Сравнительный эколого-генетический анализ микроспоридий и их хозяина – байкальской амфиподы gmelinoides fasciatus
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Краткая инструкция пользователя асу рид ран (ученого секретаря) Введение
Данная инструкция адресована сотрудникам научных организаций ран, осуществляющим сбор данных по оценке результативности деятельности...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon О проведении открытого аукциона в электронной форме
Наименование государственного заказчика: Учреждение Российской академии наук Институт неорганической химии им. А. В. Николаева Сибирского...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon О проведении запроса котировок цен на право заключения государственного контракта
Государственный заказчик: Учреждение Российской академии наук Институт неорганической химии им. А. В. Николаева Сибирского отделения...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Извещение о проведении запроса котировок (запрос котировок)
Государственный заказчик: Учреждение Российской Академии Наук Больница Пущинского научного центра ран (сокращенное бпнц ран)
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Техническое задание Общие требования
Учреждение Российской академии наук Ордена Ленина и Ордена Октябрьской революции Институт геохимии и аналитической химии им. В. И....
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Протокол заседания оус
Цкп аналитическим оборудованием, оснащенных новейшими прецизионными вы­сокопроизводительными приборами
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Указатель литературы обменных фондов библиотек 2 2013
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственная публичная научно-техническая библиотека Сибирского отделения...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Список научных публикаций сотрудников юнц ран
Венков А. В. Антироссийское антисоветское движение (1917-1918 гг.) на Украине в годы Гражданской войны. Ростов-на-Дону: Изд-во юнц...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Молекулярно- генетический профиль дофаминовой нейромедиаторной системы...
Работа выполнена в фгбу «Национальный научный центр наркологии» Миндзрава России
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Конкурс 2015 года По Программам ран программа фундаментальных исследований Президиума ран №1
Программа включает в себя три Подпрограммы (I – III). Подпрограмма I «Физика и технология наноструктур, наноэлектроника и диагностика»...
Цкп «Генетический полиморфизм» обн ран icon Инструкция по оформлению текстов докладов для опубликования в сборнике...
Объединенный институт высоких температур ран, 111116, Москва, Красноказарменная, 17а

Руководство, инструкция по применению






При копировании материала укажите ссылку © 2024
контакты
rykovodstvo.ru
Поиск